在作物研究、微生物学、药物开发等场景的科研探索中，科研人员常常要解析DNA–蛋白质的互作，以揭示基因调控网络和表观遗传机制。然而，传统DNA–蛋白质互作技术总有“难以避免”的痛点：
1、ChIP-seq：耗时长，需要大量细胞样本，且背景噪声大，信噪比低，数据解析复杂。
2、传统CUT&RUN：虽然灵敏度有所提升，但操作仍繁琐，流程复杂，重复性和效率受限。
为了解决这些问题，近岸蛋白潜心研发出NEXT CUT&RUN（NovoNGS® NEXT CUT&RUN High-Sensitivity Kit (for Illumina®)，Cat.No.: N359）——新一代精简型CUT&RUN方案，让DNA–蛋白互作分析更高效、更精准、更轻松。
五大产品优势，专为高效科研设计
1、相比传统CUT&RUN技术，背景更低，信噪比大幅提升；
2、低至5000个细胞，操作简单，仅需10 h；
3、融合pAG-Nuclease，一步实现靶标识别和高效切割；
4、抗体单次实验使用量低至0.1-0.5 μg，节省成本；
5、随附建库试剂，从靶标捕获到文库构建一套搞定。
DNA/蛋白互作研究技术比对
实验流程图
性能展示
1 NEXT CUT&RUN文库构建质量高
转录因子研究：
图1. NEXT CUT&RUN试剂盒在100K K562细胞条件下进行CTCF CUT&RUN建库。毛细管电泳结果显示，文库呈现典型的核小体周期分布，主峰180 bp以上，符合预期片段大小，表明文库构建成功且切割效率好，可用于后续高质量测序分析。
组蛋白研究：
图2. NEXT CUT&RUN试剂盒在100K K562细胞条件下进行H3K27me3 CUT&RUN建库。文库呈现典型的核小体周期分布，主峰约320 bp，符合预期片段大小，表明文库构建成功且切割效率好，可用于后续高质量测序分析。
2 下机数据背景低，信噪比高
IGV数据分析：
图3. 以100K个K562细胞为样本，使用不同品牌的CUT&RUN试剂盒对组蛋白修饰、DNA结合蛋白及转录因子进行检测。IGV结果显示，使用近岸蛋白NEXT CUT&RUN可在不同组蛋白、DNA结合蛋白和转录因子中获得背景清晰，信噪比高的互作图谱，且信噪比明显优于其他同类产品。
TSS富集分析：
图4. 以30K个K562细胞为样本，使用不同品牌的CUT&RUN试剂盒对组蛋白修饰、DNA结合蛋白及转录因子进行检测。通过TSS富集分析发现，近岸蛋白NEXT CUT&RUN试剂盒获得的TSS富集得分显著高于其他同类产品，表现出更优的信噪比。
3 NEXT CUT&RUN建库所需样本量少，仅需5000个细胞
图5. 以K562细胞为样本，使用NEXT CUT&RUN在不同细胞数量条件下对组蛋白修饰及转录因子进行检测。IGV结果显示，仅需5000个细胞量也可获得清晰、高质量结果，且峰型与高细胞量条件保持一致。
4 NEXT CUT&RUN兼容不同类型细胞的互作研究
图6. 使用NEXT CUT&RUN试剂盒对100K数量不同人源细胞进行H3K4me3抗体检测，IGV结果显示，四种不同来源的细胞均可以获得高质量的互作图谱。
产品信息
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